A propolisz, a méhpempő, a méz és a méh virágporának hatása a japán fürjek növekedési teljesítményére és immunrendszerére

Sakine Babaei

1 Baromfitudományi Tanszék, Mezőgazdasági Kar, Tarbiat Modares Egyetem, Teherán, Irán;

virágporának

Shaeban Rahimi

1 Baromfitudományi Tanszék, Mezőgazdasági Kar, Tarbiat Modares Egyetem, Teherán, Irán;

Mohammad Amir Karimi Torshizi

1 Baromfitudományi Tanszék, Mezőgazdasági Kar, Tarbiat Modares Egyetem, Teherán, Irán;

Golamhosein Tahmasebi

2 Méh- és selyemhernyó-kutatási osztály, Állattudományi Kutató Intézet, Karaj, Irán.

Seyed Naser Khaleghi Miran

1 Baromfitudományi Tanszék, Mezőgazdasági Kar, Tarbiat Modares Egyetem, Teherán, Irán;

Absztrakt

A propolisz, a méhpempő, a méz és a méh pollen etanolos kivonatának hatását a virginiamicinnel (növekedésserkentő antibiotikumként) összehasonlítva értékeltük a japán fürjek teljesítményére és immunrendszerére vonatkozóan. 256 vegyes nemű fürj csibét használtunk teljesen randomizált formában, nyolc kezeléssel, beleértve a kontrollt, a propolisz 1000 (PE1) és 5000 (PE2) mg kg -1 etanolos kivonatát, a pollenport 1000 (PO1) és 5000 (PO2) mg kg -1, méhpempő 100 mg kg -1 (RJ), méz 22 g L -1 ivóvíz (H) és virginiamicin 150 mg kg -1 (V), valamint nyolc madár négy ismétlődése minden egyes replikációban 42 napig . Jelentős különbségek voltak a súlygyarapodás (WG), a takarmányfelvétel (FI) és a takarmányátalakítási arány (FCR) között a kísérleti csoportok között. Ezenkívül a V-kezelésben (18,82%), a H- és PO2-kezelésben (16,87%) és az RJ-kezelésben (12,00%) a WG szignifikánsan magasabb volt, mint a kontroll csoportban (p Kulcsszavak: Sejt által közvetített immunitás, Takarmány-átalakítás, Mézelő méhészeti termékek, Humorális immunitás

Bevezetés

A vizsgálat célja a méhpempő, a méz, a méh pollen és az alkoholos kivonatú propolisz hatásának meghatározása volt a japán fürjek teljesítményére és immunrendszerére.

Anyagok és metódusok

Madarak és tartás. A kísérletbe 256 egynapos fürj csibét vontak be. Egyenként lemértük őket, és véletlenszerűen nyolc étrendi kezeléshez rendeltük, így mindegyik kísérleti egységnek azonos volt az átlagos súlya és nyolc madár eloszlása. Kísérleti csoportok: kontroll étrend (kiegészítés nélkül), propolisz etanolos kivonata 1000 mg kg -1 (PE1) és 5000 mg kg -1 (PE2), pollenpor 1000 mg kg -1 (PO1) és 5000 (PO2) mg kg -1, méhpempő 100 (RJ) mg kg -1, méz 22 g L -1 (H) és virginiamycin 150 mg kg -1 (V). A fürj csibéket ketrecekben (40 × 32 cm 2) tartották. A kísérleti étrendeket 1-42 napos kortól etették. A takarmány és a víz ad libitum volt elérhető. Az étrendeket szója-kukorica alapján állították össze, hogy megfeleljenek az NRC követelményeinek vagy meghaladják azokat. 18 A kísérleti csoportokat a termesztési időszakokban homokkal helyettesítették a diétákban. Az összetevők összetételét és a tápanyagelemzést az 1. táblázat ismerteti .

Asztal 1

A kísérleti étrend összetétele

Hozzávalók Az étrend százalékos aránya
Kukorica 50,70
Szójabab étel 42.52
Növényi olaj 2.00
Di-kalcium-foszfát 0,72
Kálcium-karbonát 1.25
Só 0,33
Vitamin premix 1 0,25
Ásványi előkeverék 2 0,25
DL-metionin 0,13
L-treonin 0.11
Homok 1.74
Tápanyag-összetétel
Metabolizálható energia (Kcal kg -1 ) 2800
Nyers fehérje (%) 23.00
Kalcium (%) 0,77
Elérhető foszfor (%) 0,29
Nátrium (%) 0,15
Metionin (%) 0,48
Metionin + cisztein (%) 0,85
Lizin (%) 1.28
Treonin (%) 0,98

A minta előkészítése és kivonása. A propolist, a virágport, a méhpempőt és a mézet a mézelő méhekből gyűjtötték, Állattudományi Kutató Intézet, Karaj, Irán. A propolist a feldolgozásig sötétben szárítottuk. 30,00% propolisz tinktúrát készítettünk 600 g propolisz hozzáadásával 1400 ml 70,00% (w/v) etanolhoz. Ezt összekeverjük és üvegtartályban tartjuk, naponta kétszer rázzuk, egy hét múlva szűrjük és felhasználásig 4 ° C-on tartjuk. 19.

Teljesítmény. A testtömeg (BW) és a takarmányfelvételt (FI) replikációnként a 21. és a 42. napon regisztráltuk, és ezeket az értékeket használtuk a fürjcsirkék súlygyarapodásának (WG), FI és takarmánykonverziójának (FCR) kiszámításához a napok közötti időszakokra. 0-21, 21-42, valamint a teljes kísérlethez.

1-klór-2,4-dinitrobenzol (DNCB) teszt. 42 napos korban 1 mg ml -1 DNCB oldatot (Merck, Darmstadt, Németország) elosztottunk és 2 cm2-es toll nélküli bőrfelületen (0,05 ml) tartottunk a két madár jobb oldalán ketrecenként. Hasonló helyzet a madár bal oldalán, amelyet önmagában oldószerrel (aceton: olívaolaj, 4: 1 v/v) kezeltek az oldószerhatás korrigálása érdekében. A bőr duzzadását a bőr vastagsága közötti különbségként számítottuk ki a DNCB kezelés előtt és után digitális féknyereggel. 20

Mitogén injekció . Hat hetes korukban mindegyik ketrecből két csibét injektáltunk mitogén fitohemagglutininnel (PHA-M; Gibco, Grand Island, USA) intradermálisan a balszárny szövedékébe. Minden csaj 50 μl 50 μg PHA-M szuszpenziót kapott 50 μl foszfáttal pufferolt sóoldatban. 21 Digitális tolómérővel (Mitutoyo, Kawasaki, Japán) mértük a szárnyszalag vastagságát az injekció beadása előtt (kontrollmérésként), és az injekció beadása után 24 órával a mitogénre reagálva a szárnyszalag duzzadásának elérésére. 22.

Humorális immunválasz. A Newcastle-betegség (ND) elleni oltást a hetedik napon szemcsepp (élő B1 törzs; Razi Intézet, Karaj, Irán) és AI H9N2 szubkután injekcióval hajtottuk végre a 21. napon (Newcastle és madárinfluenza elpusztított vakcinák; Razi Institute) minden csibének. Boosterként a második élő ND vakcinát (La Sota törzs) ivóvízzel végeztük a 23. napon. Az immunválaszt hemagglutinációs gátlás (HI) teszttel értékeltük. 23 Mindkét vakcina elleni HI titereket ugyanazon madarak szérummintáin határoztuk meg a 42. napon. A juh vörösvértesteket (SRBC) összegyűjtöttük és háromszor mostuk foszfátpuffer sóoldattal (PBS). A pakolt sejteket steril PBS-oldatban 5,00% -ra hoztuk. A csibéket SRBC-vel (0,1 ml/csaj) injektálták a mellizomba, majd emlékeztető injekciót követtek a 28., illetve a 35. napon. A vérmintákat a 42. napon vettük. A szérumot a vizsgálatig -20 ° C-on tároltuk. Az SRBC elleni antitestszinteket HI teszttel mértük. 24, 25

A test és a nyirokszervek súlyának meghatározása . A 42. napon levágott madarakat kizsigerelték, a burzát és a lépet eltávolították és megmérték. Az immunszervi indexet a szerv tömegének a szerv teljes testtömeghez viszonyított százalékában fejeztük ki.

A program értékelése heterofil/limfocita arány. A differenciál leukocita számhoz vérkeneteket készítettünk a szokásos kétlemezes ék eljárással. A mintákat levegőn szárítottuk, metanolban rögzítettük és Wright gyors foltokkal festettük. A keneteket megvizsgáltuk, hogy megkapjuk a limfociták és a granulociták számát 100 leukocitánként. A kapott sejtszámot használtuk a heterofil sejtek és a limfociták relatív arányának (H/L arány) kiszámításához. 26.

Statisztikai analízis. Az adatokat generalizált lineáris modell (GLM) eljárással elemeztük a teljesen randomizált kísérleti tervezéshez, hét kezeléssel és négy ismétléssel, SAS (8.2-es verzió; SAS Institute, Cary, USA) felhasználásával, és az átlagokat Tukey-teszt segítségével hasonlítottuk össze. A 0,05 alatti p értéket statisztikailag szignifikánsnak tekintettük.

Eredmények

PE1: 1000 és PE2: 5000 mg kg -1 propolisz etanolos kivonata, PO1: 1000 és PO2: 5000 mg kg -1 virágpor, RJ: 100 mg kg -1 méhpempő, H: méz 22 g L -1, C: kontroll és V: virginiamicin 150 mg kg -1. SEM: Az átlag standard hibája.

3. táblázat

A New-Castle (ND), a madárinfluenza H9N2 (AI) vírusok és az összes juh elleni vörösvérsejt (SRBC) és a japán fürjek heterofil/limfocita (H/L) aránya elleni antitest-titrálás összehasonlítása

KezelésND (log 2 SZIA)AI (log 2 SZIA)SRBCH/L
PE1 6,00 a 3,50 a 1,50 b 0,16 c
PE2 3,60 b 4,25 a 1,75 ab 0,15 c
PO1 4.00 b 3,25 ab 1,75 ab 0,12 d
PO2 5,75 a 4,50 a 3,00 a 0,15 cd
RJ 3,75 b 3,75 a 2,50 ab 0,19 ab
V 3,50 b 4,00 a 1,50 b 0,22 a
H 4,75 ab 4,50 a 2,00 ab 0,17 BC
C 3,50 b 2.00 b 1,50 b 0,21 a
SEM 0,1936 0,1694 0,1265 0,008
o -érték 0,00010,00010,00630,0001

PE1: 1000 és PE2: 5000 mg kg -1 propolisz etanolos kivonata, PO1: 1000 és PO2: 5000 mg kg -1 virágpor, RJ: 100 mg kg -1 méhpempő, H: méz 22 g L -1, C: kontroll és V: virginiamicin 150 mg kg -1. SEM: Az átlag standard hibája.

PE1: 1000 és PE2: 5000 mg kg -1 propolisz etanolos kivonata, PO1: 1000 és PO2: 5000 mg kg -1 virágpor, RJ: 100 mg kg -1 méhpempő, H: méz 22 g L -1, C: kontroll és V: virginiamicin 150 mg kg -1. SEM: Az átlag standard hibája.

Vita

A méhpempő sok flavonoidot, szerves vegyületet és zsírsavat tartalmaz. Ezek az összetevők javíthatják a fürjek növekedési teljesítményét, ami megnövekedett BW, FI és alacsonyabb FCR értéket eredményez. Korábban beszámoltak a hatóanyagok, különösen a flavonoidok hatásáról a fürjek teljesítményére stresszhelyzetben. 37

Ennek a vizsgálatnak az eredményei azt mutatták, hogy az antitest-titerek a legtöbb kezelési csoportban minden időpontban magasabbak voltak, mint a kontrollcsoporté, ami arra utal, hogy elősegíthetik a humorális immunitást. Korábbi vizsgálatok kimutatták, hogy a flavonoidok immunszupresszor hatással vannak a limfoproliferatív válaszra. E tanulmány szerint a fürjek ivóvízéhez, a propolisz etanolos kivonatához és az étrendhez hozzáadott pollenpor természetes adalékanyagának méz és méhpempő mikroelem-összetevői javíthatják a japán fürjek teljesítményét és immunrendszerének fejlődését.

Eredményeinkből arra lehetett következtetni, hogy a H, PE2 és PO2 pótlás növeli a BW-t, a limfoid szervek tömegét és az antitest-titeret a japán fürjekben. Ennek oka lehet a mézelő méhészeti termékek antimikrobiális és immunstimuláló hatása. Megnyitja a méz, a virágpor és a propolisz takarmány-adalékként való felhasználását a baromfi teljesítményének javítása érdekében.

Köszönetnyilvánítás

A szerzők őszintén köszönik a Tarbiat Modares Egyetem Mezőgazdasági Karának Baromfitudományi Tanszékének a projekt finanszírozását.